PESQUISA VETERINÁRIA BRASILEIRA

Abstract in English:

We developed and evaluated a fast and simple method to obtain suitable bone samples for densitometry and chemical analysis through biopsies of the 12th rib of cattle. The postoperative recovery, dry matter intake (DMI) and average daily weight gain (ADG) was evaluated in 36 Nellore steers, nine of which were randomly selected for the control group and 27 others were rib biopsied. Every 30 days, rib biopsy was performed in nine steers, using a corded-electric pistol-grip drill coupled with a hole saw of a 3mm diameter pilot drill bit. This rib biopsy technique provided a suitable sample obtained in a fast way and allowed the surgeon to work alone with the animal slightly sedated and restrained in the crush. Dry matter intake (DMI) was not affected in biopsied animals. At the end of the experimental period (116 days) the average daily weight gain (ADG) was similar in the steers biopsied or not. The described method provided rib samples from cattle suitable for densitometry and chemical analysis of bone tissue without effects on health and performance. This information could greatly increase the accuracy for the diagnosis of phosphorus deficiency in cattle raised on pasture and allow the evaluation of bone metabolism in experimental animals.

• Sampling method chemical analysis bone densitometry rib biopsy cattle bone mineral density Bos indicus mineral deficiency phosphorus

Abstract in Portuguese:

No presente estudo foi desenvolvida uma técnica para se obter, de forma rápida e simples, amostras da 12ª costela bovina por meio de biópsias. Avaliou-se a recuperação pós-operatória (durante 15 dias), o consumo de matéria seca (CMS) e o ganho de peso diário (GMD) de 36 novilhos Nelores, sendo nove animais controles e 27 submetidos à biópsia. A cada 30 dias biópsias de costelas foram realizadas em nove animais, usando uma furadeira elétrica acoplada a uma serra-copo com uma broca-guia de 3mm de diâmetro. Esta técnica de biópsia permitiu obter amostras ósseas de forma rápida, com o cirurgião operando sozinho e com os animais levemente sedados e em estação. Ao término do experimento (116 dias) o CMS e o GMD não foram afetados pelo procedimento cirúrgico. As amostras obtidas foram adequadas para exames radiográficos e subsequentes análises químicas. O conjunto de informações adquiridas com a técnica de biópsia de costelas permite aumentar a exatidão no diagnóstico da deficiência de fósforo em bovinos criados em pastagens e também realizar estudos sobre metabolismo ósseo em animais experimentais.

• Análise química densitometria biópsia de costela bovinos fósforo Nelore

Abstract in English:

ABSTRACT.- Fraias E., Yasunaga K.L., Peixoto R.V.R., Fonseca M.P., Fontes W. & Galera P.D. 2013. Comparison of two methods of tear sampling for protein quantification by Bradford method. Pesquisa Veterinária Brasileira 33(2):261-264. Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, Universidade de Brasília, Campus Dracy Ribeiro, Asa Norte, ICC Sul, Brasília, DF 70910-970, Brazil. E-mail: paulaeye@unb.br The aim of this study was to compare two methods of tear sampling for protein quantification. Tear samples were collected from 29 healthy dogs (58 eyes) using Schirmer tear test (STT) strip and microcapillary tubes. The samples were frozen at -80oC and analyzed by the Bradford method. Results were analyzed by Student’s t test. The average protein concentration and standard deviation from tears collected with microcapillary tube were 4.45mg/mL ±0.35 and 4,52mg/mL ±0.29 for right and left eyes respectively. The average protein concentration and standard deviation from tears collected with Schirmer Tear Test (STT) strip were and 54.5mg/mL ±0.63 and 54.15mg/mL ±0.65 to right and left eyes respectively. Statistically significant differences (p<0.001) were found between the methods. In the conditions in which this study was conducted, the average protein concentration obtained with the Bradford test from tear samples obtained by Schirmer Tear Test (STT) strip showed values higher than those obtained with microcapillary tube. It is important that concentration of tear protein pattern values should be analyzed according the method used to collect tear samples.

• Tear sampling Schirmer Bradford method lágrima Bradford

Abstract in Portuguese:

RESUMO.- Fraias E., Yasunaga K.L., Peixoto R.V.R., Fonseca M.P., Fontes W. & Galera P.D. 2013. Comparison of two methods of tear sampling for protein quantification by Bradford method. [Comparação de dois métodos de coleta de lágrima para quantificação proteica pelo método de Bradford.] Pesquisa Veterinária Brasileira 33(2):261-264. Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, Universidade de Brasília, Campus Dracy Ribeiro, Asa Norte, ICC Sul, Brasília, DF 70910-970, Brazil. E-mail: paulaeye@unb.br Compararam-se dois métodos de coleta de lágrima para quantificação proteica, utilizando-se 58 olhos de 29 cães hígidos. As amostras foram coletadas utilizando-se fitas de teste da lágrima de Schirmer (Schirmer tear test - STT) e tubos microcapilares. Após obtidas, as amostras foram congeladas a -80o C e posteriormente analisadas pelo método de Bradford. Os resultados foram analisados pelo teste T de Student. A média da concentração proteica e desvio padrão das amostras obtidas com microcapilar foi de 4,45mg/mL ±0,35 e 4,52mg/mL ±0,29 para olhos direito e esquerdo, respectivamente. Para as amostras obtidas com STT os resultados foram 4,45mg/mL ±0,35 and 4,52mg/mL ±0,29 para olhos direito e esquerdo, respectivamente. Diferenças estatisticamente significativas (p<0,001) foram encontradas entre os dois métodos. Nas condições em que o trabalho foi conduzido, a média da concentração proteica pelo método de Bradford das amostras obtidas através das tiras do STT foi superior à obtida com o tubo microcapilar. Os valores padrão da concentração protéica da lágrima obtida pelo método de Bradford devem ser analisados considerando-se o método de coleta da lágrima, uma vez que este interfere significativamente nos resultados obtidos.

Abstract in English:

ABSTRACT.- Schaefer R., Rech R.R., Silva M.C., Gava D. & Ciacci-Zanella J.R. 2013. [Guidelines for diagnosis of swine influenza.] Orientações para o diagnóstico de influenza em suínos. Pesquisa Veterinária Brasileira 33(1):61-73.Embrapa Suínos e Aves, BR 153 Km 110, Concórdia, SC 89700-000, Brazil. E-mail: rejane.schaefer@embrapa.br This article is intended to describe the adequate sample collection, the laboratory procedures/techniques, the expected results and their interpretation for diagnosis of influenza infection in swine, serving as a support for field veterinarians. In live pigs, the samples to be taken are nasal secretions, oral fluids and blood. For dead pigs, preference should be given to samples of cranioventral lung consolidation. Nasal discharge and chilled lung fragments are used for detection of virus (virus isolation - VI) or viral nucleic acids (conventional RT-PCR and real-time RT-PCR). Samples should not be frozen, because the virus is inactivated at -20°C. Molecular characterization of isolates is performed by phylogenetic analysis of gene sequences obtained by DNA sequencing. Serum is used for the detection of antibodies using hemagglutination inhibition (HI) test and ELISA. Oral fluid may be used for either antibody (ELISA) or viral detection. Fragments of lung fixed in 10% formaldehyde are used for histopathological analysis to identify bronchointerstitial pneumonia, and for immunohistochemistry (IHC) for antigens. For a successful diagnosis, sampling should be preferably performed in the acute phase of the disease to improve chances of virus detection. The best options to perform the diagnosis of influenza A in a swine herd are RT-PCR and VI from nasal swabs or oral fluid in live pigs and/or lung tissue for RT-PCR, VI or IHC in dead pigs. Serological tests are of very limited diagnostic value and are useful only to determine the immune status of the herd, not indicating clinical disease, because antibodies are detected after 7-10 days post infection (subacute phase). The diagnosis of influenza is important to evaluate the involvement of this agent in the complex of respiratory diseases in pigs. Furthermore, the isolation of influenza virus is essential for monitoring the main subtypes circulating in a given region or country, as well as for the detection of potential new viral reassortants, because influenza is considered a zoonosis.

• Influenza A virus sampling respiratory diseases vírus influenza A colheita de amostras doenças respiratórias

Abstract in Portuguese:

RESUMO.- Schaefer R., Rech R.R., Silva M.C., Gava D. & Ciacci-Zanella J.R. 2013. [Guidelines for diagnosis of swine influenza.] Orientações para o diagnóstico de influenza em suínos. Pesquisa Veterinária Brasileira 33(1):61-73.Embrapa Suínos e Aves, BR 153 Km 110, Concórdia, SC 89700-000, Brazil. E-mail: rejane.schaefer@embrapa.br Este trabalho descreve a colheita adequada de amostras, as técnicas/procedimentos disponíveis para o diagnóstico de influenza A em suínos, assim como os resultados e suas respectivas interpretações, para auxiliar médicos veterinários de campo na identificação dessa doença. Em suínos vivos, as amostras adequadas são: secreção nasal, fluido oral e sangue (soro). Para suínos mortos, colher preferencialmente amostras de pulmão com consolidação cranioventral. Secreção nasal e fragmentos de pulmão refrigerado são utilizados para detectar partícula viral viável (isolamento viral - IV) ou ácido nucleico viral (RT-PCR convencional e RT-PCR em tempo real). As amostras não devem ser congeladas, pois o vírus é inativado a -20°C. A caracterização molecular dos isolados é feita pela análise filogenética obtida pelo sequenciamento de DNA. O soro é utilizado para a detecção de anticorpos (Acs) por meio do teste da inibição da hemaglutinação e ELISA. O fluido oral pode ser utilizado para detecção de anticorpo (ELISA) ou de vírus. Fragmentos de pulmão fixados em formol a 10% são examinados microscopicamente para identificar pneumonia broncointersticial e para detecção de antígeno viral pela imuno-histoquímica (IHQ). Para o sucesso do diagnóstico, as amostras devem ser colhidas de suínos que estão preferencialmente na fase aguda da doença, para aumentar as chances de detecção viral. As melhores opções para o diagnóstico de influenza A em suínos vivos são RT-PCR e isolamento viral de amostras de swab nasal ou fluido oral. Pulmão para análise por RT-PCR, isolamento viral ou IHQ é a amostra de escolha em suínos mortos. Testes sorológicos têm valor diagnóstico limitado e são utilizados apenas para determinar o estado imune do rebanho, não indicando doença clínica, pois os Acs são detectados 7-10 dias pós-infecção (fase subaguda). O diagnóstico de influenza é importante para avaliar o envolvimento desse agente no complexo de doença respiratória suína. Além disso, o isolamento do vírus influenza é essencial para o monitoramento dos principais subtipos circulantes em uma determinada região ou país, assim como para a detecção de novos rearranjos virais, já que influenza é considerada uma zoonose.

Abstract in English:

ABSTRACT.- Teixeira L.V., Lopes S.T.A., Martins D.B., França R.T. & Fighera R.A. 2010. [Fine-needle aspiration cytology as a sampling method for histopathology in canine osteosarcoma.] Punção aspirativa por agulha fina como método de coleta de material para a histopatologia no osteossarcoma canino. Pesquisa Veterinária Brasileira 30(2):145-148. Laboratório de Análises Clínicas Veterinárias, Departamento de Clínica de Pequenos Animais, Hospital Veterinário Universitário, Universidade Federal de Santa Maria, 97105-900 Santa Maria, RS, Brazil. E-mail: luciele.sm@gmail.com Cytopathologic and histopathologic tests are important to obtain a definitive diagnosis of osteosarcoma. The sample for cytopathological exam is collected through fine-needle aspiration cytology (FNA). On the other hand, histopathological exams need a larger sample that is usually obtained by incisional biopsy. The objective of this article is to develop a FNA technique to biopsy and evaluate histopatologically samples of dogs with suspected osteosarcoma. Two FNS samples were collected from 12 such dogs. Samples obtained in the first procedure were examined cytologically. The material sampled at the second biopsy was fixed in 10% formalin and submitted to histopathological analysis. Four out of the 12 samples (33.3%) examined by the herein proposed method were diagnosed as osteosarcoma. These results indicate a possible adaptation of FNA for histopathological examination.

• Osteossarcoma citopatologia

Abstract in Portuguese:

RESUMO.- Teixeira L.V., Lopes S.T.A., Martins D.B., França R.T. & Fighera R.A. 2010. [Fine-needle aspiration cytology as a sampling method for histopathology in canine osteosarcoma.] Punção aspirativa por agulha fina como método de coleta de material para a histopatologia no osteossarcoma canino. Pesquisa Veterinária Brasileira 30(2):145-148. Laboratório de Análises Clínicas Veterinárias, Departamento de Clínica de Pequenos Animais, Hospital Veterinário Universitário, Universidade Federal de Santa Maria, 97105-900 Santa Maria, RS, Brazil. E-mail: luciele.sm@gmail.com Para a obtenção do diagnóstico definitivo do osteossarcoma realizam-se exames citopatológico e histopatológico. O material para exame citopatológico é coletado através de punção aspirativa por agulha fina (PAAF), já para a realização do exame histopatológico é necessário uma amostra de tamanho maior, geralmente conseguida através de biópsia incisional. Este trabalho tem como objetivo desenvolver uma técnica de coleta de material em cães com suspeita de osteossarcoma através de PAAF para a realização de exame histopatológico. Foram coletadas duas amostras de 12 cães suspeitos de osteossarcoma por PAAF. O material obtido pela primeira coleta foi utilizado para confirmar o diagnóstico através do exame citopatológico, enquanto que o material oriundo da segunda coleta foi fixado em formol a 10% para a análise histopatológica. Quatro das 12 amostras (33,3%) avaliadas histopatologicamente pela metodologia proposta obtiveram também o diagnóstico de osteossarcoma. Esses resultados apontam para uma possível adequação da técnica de coleta de material por PAAF para exame histopatológico.